LSM淋巴細胞分離液，從去纖維蛋白或肝素化的全血中分離淋巴細胞，用于體外分離外周血淋巴細胞，也可以從其他來源中分離單核細胞，包括臍帶血細胞和骨髓細胞。

產品特點：

MP Biomedicals對Boyum的提取配方進行了改良，在淋巴細胞分離液LSM中成功地運用sodium diatrizoate替代了sodium metrizoate。LSM(sterile-filtered) 溶液密度1.077-1.080g/ml(20℃) 。僅需一步離心操作便能高效地回收淋巴細胞。

工作原理：

　　去纖維蛋白或肝素化人血以1：1的比例用生理鹽水或*稀釋，在分離溶液中分層，低速離心30min。離心過程中，由于差速遷移終形成不同的細胞層。聚集在管底的顆粒主要是紅細胞和多形核粒細胞，它們通過梯度遷移至管底。由于其密度不同，淋巴細胞和其他單個核細胞（單核細胞和血小板）分布在血漿和LSM兩層之間。淋巴細胞可以通過吸取分界層溶液回收，后進一步清洗去除血小板，LSM和血漿。

使用方法：

　　1. 輕輕顛倒瓶子使LSM充分混合

　　2. 無菌轉移3 ml LSM到15 ml離心管中。

　　3. 混合2 ml去纖維蛋白血液或肝素化血液和2 ml 生理鹽水

　　4. 仔細的將稀釋血液加入含有3 ml LSM（室溫）的15ml離心管中，在血液和LSM中形成一個明顯的分層。不要將稀釋血液混合入LSM中。

　　5. 室溫下400xg離心15-30min，離心可以沉淀紅細胞和多形核白細胞，同時可以在LSM上形成一層單核淋巴細胞，如上圖所示（具體分層情況為血漿層-單個核細胞層-LSM層-RBC顆粒）。

　　6. 吸出淋巴細胞上方2-3mm的血漿。

　　7. 吸取淋巴細胞層以及它下面一半的LSM，并轉移到另外一個離心管。加入等體積的平衡鹽緩沖液至離心管內的淋巴細胞層中，室溫（18-25°C）離心10分鐘，離心速度設定在既不損傷細胞又能沉淀細胞即刻，例如160 – 260 xg（清洗去除LSM，并降低血小板的百分比）。

　　8. 再用平衡鹽緩沖液清洗細胞，后用適當的培養基重懸細胞。

規格參數：

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